DiI 細(xì)胞膜橙色熒光探針

產(chǎn)品貨號(hào)：D2210

儲(chǔ)存條件：-20℃

產(chǎn)品描述

DiI是一種親脂性的熒光染料，可以用來染細(xì)胞膜和其它脂溶性生物結(jié)構(gòu)，進(jìn)入細(xì)胞膜后，DiI在整個(gè)細(xì)胞膜上擴(kuò)散，最佳濃度時(shí)可以使整個(gè)細(xì)胞膜染色。DiI在進(jìn)入細(xì)胞膜之前熒光非常弱，當(dāng)與細(xì)胞膜結(jié)合后其熒光強(qiáng)度大大增強(qiáng)，DiI被激發(fā)后可以發(fā)出橙紅色的熒光，具有很高的淬滅常數(shù)，中等強(qiáng)度的光量子和很短的激發(fā)態(tài)壽命?？梢杂脴?biāo)準(zhǔn)的TRITC濾光片檢測(cè)。

DiI通常不會(huì)明顯影響細(xì)胞的生存力，因此被廣泛用于正向或逆向的，活的或固定的神經(jīng)等細(xì)胞或組織的示蹤劑或長(zhǎng)期示蹤劑（long-term tracer）。除了zui簡(jiǎn)單的細(xì)胞膜熒光標(biāo)記外，還可以用于檢測(cè)細(xì)胞的融合和粘附，檢測(cè)發(fā)育或移植過程中細(xì)胞遷移，通過FRAP（Fluorescence Recovery After Photobleaching）檢測(cè)脂在細(xì)胞膜上的擴(kuò)散，檢測(cè)細(xì)胞毒性和標(biāo)記脂蛋白等。

產(chǎn)品性質(zhì)

使用方法

1. DiD，DiO，DiI，DiR和DiS細(xì)胞膜染色液制備

（1）配置DMSO或EtOH 儲(chǔ)存液：儲(chǔ)存液用 DMSO或EtOH配置濃度1～5 mM。

注意：未使用的儲(chǔ)存液保存在-20°C，避免反復(fù)凍融。

（2）工作液制備：用合適的緩沖液（如：無血清培養(yǎng)基，HBSS或PBS）稀釋儲(chǔ)存液，配制濃度為1～5 µM的工作液。

注意：工作液的最終濃度是根據(jù)不同細(xì)胞和實(shí)驗(yàn)的經(jīng)驗(yàn)來配制?？梢詮耐扑]濃度的十倍以上尋找最佳條件。

2. 懸浮細(xì)胞染色

（1）懸浮細(xì)胞密度為 1 × 106/mL加入到工作液中。

（2）在37 ℃培養(yǎng)細(xì)胞 2～20分鐘，不同的細(xì)胞最佳培養(yǎng)時(shí)間不同。

（3）染色細(xì)胞試管在1000～1500轉(zhuǎn)離心5分鐘。

（4）傾倒上清液，再次緩慢加入預(yù)溫37℃的培養(yǎng)液。

（5）重復(fù)（3），（4）步驟兩次以上。

3. 粘壁細(xì)胞的染色

（1）使粘壁的細(xì)胞在無菌實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)。

（2）從培養(yǎng)基中移走蓋玻片，吸走過量培養(yǎng)液，將蓋玻片放在潮濕的環(huán)境中。

（3）在蓋玻片的一角加入100μL的染料工作液，輕輕晃動(dòng)使染料均勻覆蓋所有細(xì)胞。

（4）在37 ℃培養(yǎng)細(xì)胞 2～20分鐘，不同的細(xì)胞最佳培養(yǎng)時(shí)間不同。

（5）吸干染料工作液，用培養(yǎng)液洗蓋玻片2～3次，每次用預(yù)溫的培養(yǎng)基覆蓋所有細(xì)胞，培養(yǎng)5～10分鐘，然后吸干培養(yǎng)基。

4. 顯微鏡檢測(cè)

（1）DiD，DiO，DiI，DiR和DiS濾光器的選擇參見表1。

（2）多色染料的同時(shí)檢測(cè)，濾光器按照以下設(shè)定：

a) DiI和DiO＝Omega XF52，Chroma 51004；

b) DiI和DiD＝Omega XF92，Chroma 51007；

c) DiI，DiO和DiD＝Omega XF93，Chroma 61005

5. 流式細(xì)胞儀的檢測(cè)

DiD，DiO，DiI，DiR和DiS 染色的細(xì)胞可以分別用經(jīng)典的FL1，F(xiàn)L2，F(xiàn)L3和FL4流式細(xì)胞儀檢測(cè)。

注意事項(xiàng)

為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。

本品僅用于實(shí)驗(yàn)研究。